Features:
Durch die Optimierung der bewährten DFS-Taq DNA
Polymerase mit neuen Reaktionspuffer und speziellen Additiven entstand eine Polymerase, die nicht nur frei von bakterieller DNA ist, sondern auch sehr robust gegenüber
PCR-Inhibitoren reagiert (Biomolekülen wie Polysacchariden, Fette und Proteine). Gesteigerte Performance des Enzyms sichert überlegene Sensitivität und zuverlässige Amplifikation.
Beschreibung:
Die Polymerase repliziert DNA bei 72°C. Sie katalysiert die Polymerisation von Nukleotiden zu Doppelstrang-DNA in 5´-->3´ Richtung und besitzt 5´-->3´ Exonuklease-Aktivität.
Anwendungsbereich:
Anstelle von konventionell gereinigter Taq-DNA-Polymerase für sensitive PCR Untersuchungen, Nachweise von Bakterien-DNA oder wenn Biomoleküle die PCR
inhibieren.
Konzentration:
5 units/μl gelöst in 10 mM KPO4 (pH 7.4 bei 25 °C), 0.1 mM EDTA, 0.1%, Tween 20, 0.1 % Triton X-100 und 50 % (v/v) Glycerin.
Unitdefinition:
Ein Unit ist die Enzymmenge, die bei 74°C in 30 min 10 nmol Desoxyribonukleotide in TCA-fällbares, säureunlösliches Material umwandelt
Endonukleasen:
- Eine Inkubation von 20 Units des Enzyms in 50 μl 1x
Reaktionspuffer mit 1 μg LambdaDNA für 16 h bei 65 °C
ergibt keinen nachweisbaren DNA-Abbau.
- Eine Inkubation von 20 Units des Enzyms in 50 μl 1x
Reaktionspuffer mit 1 μg Lambda EcoR I/Hind III-
Fragmenten für 16 h bei 65°C führt zu keinem
nachweisbaren Abbau der DNA.
- Eine Inkubation von 32 Units des Enzyms in 50 μl 1x
Reaktionspuffer mit 1 μg supercoiled pUC18 DNA für
16 h bei 70°C resultiert in keiner Entwindung der DNA.
Priming-Aktivität:
- Eine Inkubation von 40 Units des Enzyms in 100 μl 1x
Reaktionspuffer mit 100 ng Template-DNA und je
0.2 mM dNTPs führt ohne Primer zu keiner DNA-Synthese.
PCR-Test:
- Gute DNA-Amplifikationen wurden bei Verwendung von
Lambda-DNA (amplifiziertes Fragment 12 kb) und humaner
Plazenta-DNA (amplifiziertes Fragment 3.0 kb) als
Templates erreicht.
DNA-Gehalt
- Frei von Kontaminationen mit enterobakterieller DNA.
Reaktionspuffer:
DFS-Plus Taq DNA Polymerase wird mit zwei
Ammoniumsulfat Puffern und MgCl2 (100mM) geliefert.
Lagerung:
Um das Wachstum von Bakterien zu verhindern, die während der Verwendung in die Lösungen eingebracht werden können, wird eine Lagerung bei –20 °C empfohlen.
Transport: Mit Kühlakkus
Komponenten | Volumen pro Reaktion |
10X Reaktionspuffer | 5 µl |
100 mM MgCl2 | optional |
dNTP-MIx (40mM) | 1,0 µl |
Up-stream Primer (10µM stock) |
0.5-2,5 µl |
Down-stream Primer (10µM stock) | 0.5-2,5 µl |
Template DNA |
0.1-15 ng/mlPlasmid DNA 1-10 µg/ml genomische DNA |
Maximo DFS-Plus Taq DNA Pol (5µ/µl) | 0.1 - 0,8 µl |
Sterile dest. Water (PCR-Grade) | bis 50µl Reaktionsvolumen |
Hinweis:
- Alle Komponenten vor dem Ansatz vortexen
- Reaktionsgemisch bei Raumtemperatur ansetzen
- Das Enzym nach der Template-DNA zusetzen
- Möglicherweise ist es erforderlich die MgCl2 zu optimieren
Schritt | Zeit | Temperatur |
Erste Denaturierung | ca. 5 min |
94-95°C |
25-30 Zyklen: Denaturierung Annealing Extension |
10-25 sec 10-25 sec 60 sec |
94-95°C |
Schluss-Extension | 5 min |
72°C |
DNA-frei, sensibler und prozessiver
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Final price excl. shipping costs3
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Quality Test:
- Endonucleases Incubation of 20 units of the enzyme in 1x reaction buffer with 1 μg lambda DNA for 16 h at 65°C in 50 μl yields no detectable degradation of
DNA.
- Incubation of 20 units of the enzyme in 1x reaction buffer with 1 μg lambda DNA EcoR I/Hind III fragments for 16 h at 65°C in 50 μl yields no detectable degradation of DNA.
- Incubation of 32 units of the enzyme in 1x reaction buffer with 1 μg supercoiled pUC18 DNA for 16 h at 70°C in 50 μl resulted in no relaxation.
- Priming activity Incubation of 40 units of the enzyme in 1x reaction buffer with 100 ng template DNA and 0.2 mM dNTPs each, but without primers in 100 μl resulted in no DNA synthesis.
- PCR Test Good performance of DNA amplification was confirmed by using Lambda DNA as template (amplified fragment 12 kb) and human placenta DNA as template (amplified fragment 3.0
kb).
- No DNA contamination with enterobacterial DNA